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    誘發(fā)白血病動(dòng)物模型
    當前位置:首頁(yè) > 人類(lèi)疾病動(dòng)物模型目錄 > 內分泌及代謝性疾病模型 > 誘發(fā)白血病動(dòng)物模型

    前言

    白血病(leukemia)是造血組織的惡性增殖性疾病,其特點(diǎn)是骨髓及其他造血組織中大量無(wú)核細胞無(wú)限制增生,進(jìn)入外周血液,臨床表現以骨髓、脾、肝等造血器官中的白血病細胞惡性增生與腫大,并浸潤到全身各組織臟器中,伴有不同程度的貧血、出血、感染發(fā)熱以及骨骼疼痛。白血病的發(fā)病率和死亡率逐年增加,居35歲以下青少年惡性腫瘤的首位。因此,制備相應的動(dòng)物模型對其研究具有重要的意義。絕大多數人類(lèi)白血病可以用化學(xué)(如燒化劑)、物理(如電離輻射)、生物(如反轉錄病毒)以及轉基因方法,在不同動(dòng)物(小鼠、豚鼠、大鼠、貓、牛、長(cháng)臂猿等)中誘發(fā)白血病,建立動(dòng)物模型。

    誘發(fā)白血病動(dòng)物模型目前最常用的是通過(guò)病毒誘導法建立動(dòng)物模型。誘發(fā)動(dòng)物模型制作方法簡(jiǎn)便,重復性好,在短時(shí)間內可誘導出大量疾病模型,并能?chē)栏窨刂聘鞣N條件使復制出的疾病模型適合研究目的需要,因而在白血病研究中常用,廣泛用于藥物篩選、毒理、傳染病、腫瘤、病理機制的研究。但該模型是通過(guò)人為限定方式而產(chǎn)生的,多數情況下與臨床所見(jiàn)自然發(fā)生的疾病有一定差異,且許多人類(lèi)疾病目前還不能用人工誘發(fā)的方法復制,因而又有一定的局限性。

    部分造模方法

    使用動(dòng)物:小鼠

    【造模機制】:

    某些白血病,特別是病毒誘發(fā)的白血病,利用組織培養方法有可能建成懸浮式生長(cháng)的細胞株,因此,采用津638病毒誘發(fā)昆明小鼠白血病組織的含細胞提取液,皮下注射給新生615小鼠,經(jīng)81天潛伏期,取1只患白血病的615小鼠,用生理鹽水制備25%的脾細胞懸液,皮下注射給4 只成年615小鼠,誘發(fā)白血病發(fā)生,平均存活時(shí)間為29.7天,以患病小鼠的脾臟為瘤源,在615小鼠連續移植傳代,能百分之百發(fā)病,且存活時(shí)間逐漸縮短,達30代后建成穩定的白血病模型,稱(chēng)L615白血病動(dòng)物模型。

    【造模方法】:

    L615白血病細胞進(jìn)行體外傳代后,確定活細胞數占總細胞數的96%以上,按1×106個(gè)細胞經(jīng)腹腔注射入正常L615小鼠。接種后第3天起,每日斷尾取血進(jìn)行外周血白細胞計數及血涂片后行瑞氏染色和過(guò)氧化物酶染色后找白血病細胞,證實(shí)種鼠發(fā)病后,模型建立成功。第 7天小鼠瀕死前用頸椎脫位法處死后,將小鼠浸于75%乙醇中10分鐘,在無(wú)菌條件下取脾臟,分離干凈脾臟包膜后,預冷PBS液清洗2次,在100目金屬網(wǎng)中邊研磨邊滴加RPMI 1640液,直至研磨完全后收集細胞懸液,以1500r/min離心5分鐘,棄去上清液后,用自配預冷紅細胞裂解液處理10分鐘后,再次用200目尼龍網(wǎng)過(guò)濾,RPMI 1640培養液重懸并計數,按1×105個(gè)細胞的接種量接種于實(shí)驗的L615小鼠腹腔內即可獲得T淋巴細胞白血病動(dòng)物模型。

    【模型特點(diǎn)】:

    L615白血病小鼠存活時(shí)間為(6.7±1.2)天,除皮下接種外,腹腔接種亦可百分之百發(fā)病,存活時(shí)間稍短,但無(wú)腹水形成。L615小鼠白血病對各類(lèi)抗腫瘤藥物有不同程度的敏感性。

    【模型來(lái)源】:

    中國醫學(xué)科學(xué)院天津血液病研究所。

    【模型的評估和應用】:

    L615T淋巴細胞白血病小鼠,是我國自已建立的T淋巴細胞白血病小鼠動(dòng)物模型。它是人類(lèi)T細胞白血病發(fā)病機制、藥物篩選及藥效、預后等研究的很好的動(dòng)物模型。在此基礎上建立了我國特有的小鼠白血病模型系統,如L7212、L7710、L7711、L759、L7811等均為T(mén)淋巴系統白血病。

      

    參考文獻:

    1.鄧揚嘉,徐詣芝,婁世鋒.急性髓性白血病SCID小鼠模型的建立及鑒定.現代生物醫學(xué)進(jìn)展,2008,8(1): 53-55

    2.朱玉峰,王元占,孟凡義.BCR/ABL轉基因動(dòng)物模型研究進(jìn)展及應用.中國實(shí)驗血液學(xué)雜志,2011,19 (6):1532-1535

    3.劉偉,季明春,李厚達. 人慢性粒細胞白血病動(dòng)物模型研究進(jìn)展.中國比較醫學(xué)雜志,2005,15 (1):55-58

    4.李麗霞,湯永民,顧偉忠,等.急性B淋巴細胞白血病動(dòng)物模型的建立. 浙江大學(xué)學(xué)報:醫學(xué)版,2008,37(5): 511-514

    5.楊曉鯤. 鄭峻松,張新,等.GITR抗體對L615白血病抑制作用的實(shí)驗研究. 第三軍醫大學(xué)學(xué)報,2006,28 (18):1837-1841

    6.周曉燕,鄒琳.白血病小鼠模型的建立與應用現狀.分子診斷與治療雜志,2011,3 (3):212-216

    7.Ohsugi T, Yamaguchi K, Kumasaka T, et a]_ Rapid tumor death model for evalualion of new therapeutic agents for adult T-cell leukemia. Lab Invest,2004, 84 (2): 263-266

    8.Ramshaw HS, Bardy PG, Lee MA, el al. Chronic myelomoaocylic leukemia requires granulocyte­ macrophage colony-stimulating factor for growth in vitro and in vivo. Exp Hematol,2002,30(10):1124-1131

    9.Wang S, Yu WM, Zhang W, et al. Noonan syndrome/ leukemia-associated gain-of-function mutations in SHP-2 phosphatase (PTPN 11) enhance cell migration and angiogenesis. J Biol Chem, 2009, 284 (2):913-920

    10.Xu D,Wang S,Yu  WM,et al. A germline  gain-of­function mutation in Ptpn 11 (Shp-2) phosphatase induces myeloproliferative disease by aberrant activation of hemalopoielic stem cells. Blood, 2010, 116(18):3611-3621

    模型目錄
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    誘發(fā)白血病動(dòng)物模型

    前言

    白血病(leukemia)是造血組織的惡性增殖性疾病,其特點(diǎn)是骨髓及其他造血組織中大量無(wú)核細胞無(wú)限制增生,進(jìn)入外周血液,臨床表現以骨髓、脾、肝等造血器官中的白血病細胞惡性增生與腫大,并浸潤到全身各組織臟器中,伴有不同程度的貧血、出血、感染發(fā)熱以及骨骼疼痛。白血病的發(fā)病率和死亡率逐年增加,居35歲以下青少年惡性腫瘤的首位。因此,制備相應的動(dòng)物模型對其研究具有重要的意義。絕大多數人類(lèi)白血病可以用化學(xué)(如燒化劑)、物理(如電離輻射)、生物(如反轉錄病毒)以及轉基因方法,在不同動(dòng)物(小鼠、豚鼠、大鼠、貓、牛、長(cháng)臂猿等)中誘發(fā)白血病,建立動(dòng)物模型。

    誘發(fā)白血病動(dòng)物模型目前最常用的是通過(guò)病毒誘導法建立動(dòng)物模型。誘發(fā)動(dòng)物模型制作方法簡(jiǎn)便,重復性好,在短時(shí)間內可誘導出大量疾病模型,并能?chē)栏窨刂聘鞣N條件使復制出的疾病模型適合研究目的需要,因而在白血病研究中常用,廣泛用于藥物篩選、毒理、傳染病、腫瘤、病理機制的研究。但該模型是通過(guò)人為限定方式而產(chǎn)生的,多數情況下與臨床所見(jiàn)自然發(fā)生的疾病有一定差異,且許多人類(lèi)疾病目前還不能用人工誘發(fā)的方法復制,因而又有一定的局限性。

    部分造模方法

    使用動(dòng)物:小鼠

    【造模機制】:

    某些白血病,特別是病毒誘發(fā)的白血病,利用組織培養方法有可能建成懸浮式生長(cháng)的細胞株,因此,采用津638病毒誘發(fā)昆明小鼠白血病組織的含細胞提取液,皮下注射給新生615小鼠,經(jīng)81天潛伏期,取1只患白血病的615小鼠,用生理鹽水制備25%的脾細胞懸液,皮下注射給4 只成年615小鼠,誘發(fā)白血病發(fā)生,平均存活時(shí)間為29.7天,以患病小鼠的脾臟為瘤源,在615小鼠連續移植傳代,能百分之百發(fā)病,且存活時(shí)間逐漸縮短,達30代后建成穩定的白血病模型,稱(chēng)L615白血病動(dòng)物模型。

    【造模方法】:

    L615白血病細胞進(jìn)行體外傳代后,確定活細胞數占總細胞數的96%以上,按1×106個(gè)細胞經(jīng)腹腔注射入正常L615小鼠。接種后第3天起,每日斷尾取血進(jìn)行外周血白細胞計數及血涂片后行瑞氏染色和過(guò)氧化物酶染色后找白血病細胞,證實(shí)種鼠發(fā)病后,模型建立成功。第 7天小鼠瀕死前用頸椎脫位法處死后,將小鼠浸于75%乙醇中10分鐘,在無(wú)菌條件下取脾臟,分離干凈脾臟包膜后,預冷PBS液清洗2次,在100目金屬網(wǎng)中邊研磨邊滴加RPMI 1640液,直至研磨完全后收集細胞懸液,以1500r/min離心5分鐘,棄去上清液后,用自配預冷紅細胞裂解液處理10分鐘后,再次用200目尼龍網(wǎng)過(guò)濾,RPMI 1640培養液重懸并計數,按1×105個(gè)細胞的接種量接種于實(shí)驗的L615小鼠腹腔內即可獲得T淋巴細胞白血病動(dòng)物模型。

    【模型特點(diǎn)】:

    L615白血病小鼠存活時(shí)間為(6.7±1.2)天,除皮下接種外,腹腔接種亦可百分之百發(fā)病,存活時(shí)間稍短,但無(wú)腹水形成。L615小鼠白血病對各類(lèi)抗腫瘤藥物有不同程度的敏感性。

    【模型來(lái)源】:

    中國醫學(xué)科學(xué)院天津血液病研究所。

    【模型的評估和應用】:

    L615T淋巴細胞白血病小鼠,是我國自已建立的T淋巴細胞白血病小鼠動(dòng)物模型。它是人類(lèi)T細胞白血病發(fā)病機制、藥物篩選及藥效、預后等研究的很好的動(dòng)物模型。在此基礎上建立了我國特有的小鼠白血病模型系統,如L7212、L7710、L7711、L759、L7811等均為T(mén)淋巴系統白血病。

      

    參考文獻:

    1.鄧揚嘉,徐詣芝,婁世鋒.急性髓性白血病SCID小鼠模型的建立及鑒定.現代生物醫學(xué)進(jìn)展,2008,8(1): 53-55

    2.朱玉峰,王元占,孟凡義.BCR/ABL轉基因動(dòng)物模型研究進(jìn)展及應用.中國實(shí)驗血液學(xué)雜志,2011,19 (6):1532-1535

    3.劉偉,季明春,李厚達. 人慢性粒細胞白血病動(dòng)物模型研究進(jìn)展.中國比較醫學(xué)雜志,2005,15 (1):55-58

    4.李麗霞,湯永民,顧偉忠,等.急性B淋巴細胞白血病動(dòng)物模型的建立. 浙江大學(xué)學(xué)報:醫學(xué)版,2008,37(5): 511-514

    5.楊曉鯤. 鄭峻松,張新,等.GITR抗體對L615白血病抑制作用的實(shí)驗研究. 第三軍醫大學(xué)學(xué)報,2006,28 (18):1837-1841

    6.周曉燕,鄒琳.白血病小鼠模型的建立與應用現狀.分子診斷與治療雜志,2011,3 (3):212-216

    7.Ohsugi T, Yamaguchi K, Kumasaka T, et a]_ Rapid tumor death model for evalualion of new therapeutic agents for adult T-cell leukemia. Lab Invest,2004, 84 (2): 263-266

    8.Ramshaw HS, Bardy PG, Lee MA, el al. Chronic myelomoaocylic leukemia requires granulocyte­ macrophage colony-stimulating factor for growth in vitro and in vivo. Exp Hematol,2002,30(10):1124-1131

    9.Wang S, Yu WM, Zhang W, et al. Noonan syndrome/ leukemia-associated gain-of-function mutations in SHP-2 phosphatase (PTPN 11) enhance cell migration and angiogenesis. J Biol Chem, 2009, 284 (2):913-920

    10.Xu D,Wang S,Yu  WM,et al. A germline  gain-of­function mutation in Ptpn 11 (Shp-2) phosphatase induces myeloproliferative disease by aberrant activation of hemalopoielic stem cells. Blood, 2010, 116(18):3611-3621

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