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    年齡相關(guān)性黃斑變性
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    前言

    年齡相關(guān)性黃斑變性(age related macular dege­neralion, AMD)是65歲以上老年人致盲的主要原因。AMD分為無(wú)新生血管生成的干性以及新生血管生成的濕性表現。濕性AMD患者發(fā)生CNV是導致視力喪失的最常見(jiàn)因素。本章將介紹CNV的造模方法。

    部分造模方法

    使用動(dòng)物:小鼠、家兔、獼猴

    【造模機制】:

    激光誘導CNV模型是常見(jiàn)的方法。1979年,Ryan等首次采用高功率激光穿透Bruch膜制作出CNV動(dòng)物模型。1989年,Dobi等第一次應用647nm波長(cháng)、120mW的氪激光可造成CNV模型。1998年,Tobe等將氪激光光凝術(shù)應用于制作小鼠CNV模型,此后激光誘導CNV模型被普遍應用于基礎實(shí)驗和治療方法的研究中。藍綠氬激光穿透力較弱,主要作用于視網(wǎng)膜內層和RPE層。氪激光主要作用于RPE和脈絡(luò )膜內層。激光誘導CNV模型的優(yōu)點(diǎn)在于與人類(lèi)CNV疾病發(fā)生自然過(guò)程相似,但不同研究CNV模型成功率不同,與不同實(shí)驗采用動(dòng)物類(lèi)型、激光種類(lèi)及對觀(guān)察診斷CNV的標準不一有關(guān)。

    【造模方法】:

    1.小鼠 雙眼滴用復方托吡卡胺滴眼液散瞳,腹腔注射1%戊巴比妥鈉(10ml/kg)麻醉小鼠,實(shí)驗眼滴用醫用透明質(zhì)酸鈉凝膠,眼前放置2cm×2cm蓋玻片,經(jīng)裂隙燈用532nm激光功率200mW,光斑直徑100m,曝光時(shí)間100毫秒,距視乳頭1.5-2.0PI左右位置以視乳頭為中心進(jìn)行光凝,其中行CNV模型鑒定和免疫熒光染色組小鼠光凝4~6點(diǎn)/眼;光凝后有氣泡產(chǎn)生標志擊破Bruch膜, 記為有效點(diǎn)。

    2.家兔 兔眼激光誘導模型在國內應用較為廣泛,優(yōu)點(diǎn)在于兔眼較之鼠眼大,易于模型實(shí)驗操作與檢查。雙眼散瞳,眼表滴入表面麻醉。每只眼在全視網(wǎng)膜鏡下用氪激光,波長(cháng)647nm,功率700~800mW,光斑直徑50µm,激光功率曝光時(shí)間0.05秒,在視乳頭及髓線(xiàn)下方光凝20個(gè)點(diǎn),光斑間隔300µm。

    3.獼猴 猴的視網(wǎng)膜及黃斑結構與人類(lèi)相似,眼球大小便于操作,具有熒光滲漏的特點(diǎn),是用于臨床藥物篩選的首選模型。Ryan等利用氬激光,功率200~950mW,光斑直徑50~200µm,曝光時(shí)間0.1~0.5秒。

    【模型特點(diǎn)】:

    1.小鼠 常采用免疫組化技術(shù)應用CD31標記內皮細胞,在光疑后14天時(shí)CNV模型鼠的視網(wǎng)膜光激部位可見(jiàn)明顯的綠色熒光團塊,表明新生血管形成,從而表示CNV模型誘導成功。

    2.家兔 激光斑出現強熒光滲漏為CNV形成,第3~4周見(jiàn)穩定的滲漏光斑,CNV發(fā)生率66.7%,滲漏率51.7%。光凝后3天即有少量光斑出現熒光滲涌,并逐漸增多,21天達高峰,并持續到光凝后56天。OCT顯示造模后7天少量光斑部位色素上皮層反射中斷,其下方局灶性高密度紅白色反射區呈團塊狀、梭形或不規則形,邊緣為瘢痕形成的不規則強反射區,CNV出現;之后CNV逐漸增多,至21天各組達最多;晚期部分CNV瘢痕化。熒光滲漏的計算[(熒光滲漏發(fā)生率=出現熒光滲漏的激光點(diǎn)數/所觀(guān)察的激光點(diǎn)數)×100%]。

    3.猴 光凝猴視網(wǎng)膜出現新生血管以及眼底血管熒光造影觀(guān)察出現血管滲漏,為成功建立了CNV動(dòng)物模型。但相比鼠類(lèi)和家兔,非人類(lèi)靈長(cháng)類(lèi)的CNV滲漏率較低約30%,三度損傷約占70%,四度損傷約為20%~40%。實(shí)驗組應選用8~10只猴才能得到具有統計學(xué)意義的結果。因為猴來(lái)源少,費用高,飼養較困難,模型制作需4周以上,因此應用受限。

    【模型評估和應用】:

    小鼠激光誘導CNV模型的成功率約為80%,兔的激光誘導CNV模型的成功率約50%,而選用非人類(lèi)靈長(cháng)類(lèi)動(dòng)物激光誘導CNV模型的成功率最低約30%。激光誘導CNV動(dòng)物模型可模擬人類(lèi)濕性AMD疾病,采用這種方法直接損傷脈絡(luò )膜,與人類(lèi)CNV存在共同之處,對于研究濕性AMD的發(fā)病機制與治療方法有重要的臨床價(jià)值。

     

    參考文獻:

    1.王應利,惠延年.糖尿病視網(wǎng)膜病變動(dòng)物模型選擇的注意事項.中華眼科雜志,2012,48 (7):587-590

    2.Baehr W, Frederick JM. Naturally occurring animal models with outer retina phenotypes. Vis Res,2009,49: 2636-2652

    3.Bourne MC, Campbell DA, Tansley K. Hereditary degeneration of rat retina. Br J Ophthalmol, 1938,22(10): 613-623

    4.Bundey S,Crews SJ. A study of retinitis pigrnentosa in the city of Birmingham-I. J Med Genet, 1984,21(6):417-420

    5.Chang B, Heckenlively IB,Bayley PR.et a.I. The nob2 mouse, a null mutation in Cacnalf: anatomical and functional abnormalities in the outer retina and their consequences on ganglion cell visual responses. Vis Neurosci, 2006, 23 (1): 11-24

    6.Criswell MH,Ciulla TA,Hill TE,et al. The squirrelmonkey: characterization of a new-world primate model of xperimental choroidal neovascularizalion and comparison with the macaque. Invest Ophthalmol Vis Sci,2004, 45 (2): 625-634

    7.Gu Y, Wang L,Zhou J,et al. A naturally-occurring mutation in CacnaIf in a rat model of congenital stationary night blindness. Mo! Vis,2008, 14(1):20-28

    8.Lue CL. Rod cell activity in retinal degenerative rats. J Formos Med Assoc, 1994,93(7):605-610

    9.Pinkert CA. Transgenic animal technology. New York: Academic Press, 1994

    10.Sato H, Suzuki T, Ikeda K, et aL A monogenic dominant mutation in Rom l generated by N-ethyl-N-nitrosourea mutagenesis causes retinal degeneration in mice. Mol Vis,2010, 16:378-391

    11.Williams TP, Howell WL. Action spectrum of retinal light-damage in albino rats. Invest Ophthalmol Vis Sci, 1983, 24 (3):285-287

    12.Won J, Shi LY, Hicks W, et al. Mouse model resources for vision research. J Ophthalmol,2011,2011:391384

    13.Xie B,Nakanishi S,Guo Q,et al. A novel middle­wavelength opsin (M-opsin) null-mutation in the retinal cone dysfunction ral. Exp Eye Res,2010,91(1):26-33

    模型目錄
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    年齡相關(guān)性黃斑變性

    前言

    年齡相關(guān)性黃斑變性(age related macular dege­neralion, AMD)是65歲以上老年人致盲的主要原因。AMD分為無(wú)新生血管生成的干性以及新生血管生成的濕性表現。濕性AMD患者發(fā)生CNV是導致視力喪失的最常見(jiàn)因素。本章將介紹CNV的造模方法。

    部分造模方法

    使用動(dòng)物:小鼠、家兔、獼猴

    【造模機制】:

    激光誘導CNV模型是常見(jiàn)的方法。1979年,Ryan等首次采用高功率激光穿透Bruch膜制作出CNV動(dòng)物模型。1989年,Dobi等第一次應用647nm波長(cháng)、120mW的氪激光可造成CNV模型。1998年,Tobe等將氪激光光凝術(shù)應用于制作小鼠CNV模型,此后激光誘導CNV模型被普遍應用于基礎實(shí)驗和治療方法的研究中。藍綠氬激光穿透力較弱,主要作用于視網(wǎng)膜內層和RPE層。氪激光主要作用于RPE和脈絡(luò )膜內層。激光誘導CNV模型的優(yōu)點(diǎn)在于與人類(lèi)CNV疾病發(fā)生自然過(guò)程相似,但不同研究CNV模型成功率不同,與不同實(shí)驗采用動(dòng)物類(lèi)型、激光種類(lèi)及對觀(guān)察診斷CNV的標準不一有關(guān)。

    【造模方法】:

    1.小鼠 雙眼滴用復方托吡卡胺滴眼液散瞳,腹腔注射1%戊巴比妥鈉(10ml/kg)麻醉小鼠,實(shí)驗眼滴用醫用透明質(zhì)酸鈉凝膠,眼前放置2cm×2cm蓋玻片,經(jīng)裂隙燈用532nm激光功率200mW,光斑直徑100m,曝光時(shí)間100毫秒,距視乳頭1.5-2.0PI左右位置以視乳頭為中心進(jìn)行光凝,其中行CNV模型鑒定和免疫熒光染色組小鼠光凝4~6點(diǎn)/眼;光凝后有氣泡產(chǎn)生標志擊破Bruch膜, 記為有效點(diǎn)。

    2.家兔 兔眼激光誘導模型在國內應用較為廣泛,優(yōu)點(diǎn)在于兔眼較之鼠眼大,易于模型實(shí)驗操作與檢查。雙眼散瞳,眼表滴入表面麻醉。每只眼在全視網(wǎng)膜鏡下用氪激光,波長(cháng)647nm,功率700~800mW,光斑直徑50µm,激光功率曝光時(shí)間0.05秒,在視乳頭及髓線(xiàn)下方光凝20個(gè)點(diǎn),光斑間隔300µm。

    3.獼猴 猴的視網(wǎng)膜及黃斑結構與人類(lèi)相似,眼球大小便于操作,具有熒光滲漏的特點(diǎn),是用于臨床藥物篩選的首選模型。Ryan等利用氬激光,功率200~950mW,光斑直徑50~200µm,曝光時(shí)間0.1~0.5秒。

    【模型特點(diǎn)】:

    1.小鼠 常采用免疫組化技術(shù)應用CD31標記內皮細胞,在光疑后14天時(shí)CNV模型鼠的視網(wǎng)膜光激部位可見(jiàn)明顯的綠色熒光團塊,表明新生血管形成,從而表示CNV模型誘導成功。

    2.家兔 激光斑出現強熒光滲漏為CNV形成,第3~4周見(jiàn)穩定的滲漏光斑,CNV發(fā)生率66.7%,滲漏率51.7%。光凝后3天即有少量光斑出現熒光滲涌,并逐漸增多,21天達高峰,并持續到光凝后56天。OCT顯示造模后7天少量光斑部位色素上皮層反射中斷,其下方局灶性高密度紅白色反射區呈團塊狀、梭形或不規則形,邊緣為瘢痕形成的不規則強反射區,CNV出現;之后CNV逐漸增多,至21天各組達最多;晚期部分CNV瘢痕化。熒光滲漏的計算[(熒光滲漏發(fā)生率=出現熒光滲漏的激光點(diǎn)數/所觀(guān)察的激光點(diǎn)數)×100%]。

    3.猴 光凝猴視網(wǎng)膜出現新生血管以及眼底血管熒光造影觀(guān)察出現血管滲漏,為成功建立了CNV動(dòng)物模型。但相比鼠類(lèi)和家兔,非人類(lèi)靈長(cháng)類(lèi)的CNV滲漏率較低約30%,三度損傷約占70%,四度損傷約為20%~40%。實(shí)驗組應選用8~10只猴才能得到具有統計學(xué)意義的結果。因為猴來(lái)源少,費用高,飼養較困難,模型制作需4周以上,因此應用受限。

    【模型評估和應用】:

    小鼠激光誘導CNV模型的成功率約為80%,兔的激光誘導CNV模型的成功率約50%,而選用非人類(lèi)靈長(cháng)類(lèi)動(dòng)物激光誘導CNV模型的成功率最低約30%。激光誘導CNV動(dòng)物模型可模擬人類(lèi)濕性AMD疾病,采用這種方法直接損傷脈絡(luò )膜,與人類(lèi)CNV存在共同之處,對于研究濕性AMD的發(fā)病機制與治療方法有重要的臨床價(jià)值。

     

    參考文獻:

    1.王應利,惠延年.糖尿病視網(wǎng)膜病變動(dòng)物模型選擇的注意事項.中華眼科雜志,2012,48 (7):587-590

    2.Baehr W, Frederick JM. Naturally occurring animal models with outer retina phenotypes. Vis Res,2009,49: 2636-2652

    3.Bourne MC, Campbell DA, Tansley K. Hereditary degeneration of rat retina. Br J Ophthalmol, 1938,22(10): 613-623

    4.Bundey S,Crews SJ. A study of retinitis pigrnentosa in the city of Birmingham-I. J Med Genet, 1984,21(6):417-420

    5.Chang B, Heckenlively IB,Bayley PR.et a.I. The nob2 mouse, a null mutation in Cacnalf: anatomical and functional abnormalities in the outer retina and their consequences on ganglion cell visual responses. Vis Neurosci, 2006, 23 (1): 11-24

    6.Criswell MH,Ciulla TA,Hill TE,et al. The squirrelmonkey: characterization of a new-world primate model of xperimental choroidal neovascularizalion and comparison with the macaque. Invest Ophthalmol Vis Sci,2004, 45 (2): 625-634

    7.Gu Y, Wang L,Zhou J,et al. A naturally-occurring mutation in CacnaIf in a rat model of congenital stationary night blindness. Mo! Vis,2008, 14(1):20-28

    8.Lue CL. Rod cell activity in retinal degenerative rats. J Formos Med Assoc, 1994,93(7):605-610

    9.Pinkert CA. Transgenic animal technology. New York: Academic Press, 1994

    10.Sato H, Suzuki T, Ikeda K, et aL A monogenic dominant mutation in Rom l generated by N-ethyl-N-nitrosourea mutagenesis causes retinal degeneration in mice. Mol Vis,2010, 16:378-391

    11.Williams TP, Howell WL. Action spectrum of retinal light-damage in albino rats. Invest Ophthalmol Vis Sci, 1983, 24 (3):285-287

    12.Won J, Shi LY, Hicks W, et al. Mouse model resources for vision research. J Ophthalmol,2011,2011:391384

    13.Xie B,Nakanishi S,Guo Q,et al. A novel middle­wavelength opsin (M-opsin) null-mutation in the retinal cone dysfunction ral. Exp Eye Res,2010,91(1):26-33

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