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1、動(dòng)物組織采集

①?取材應在冰上進(jìn)行，取材后組織用生理鹽水沖洗干凈，去除血漬和污物，并剔除非研究所需的組織特別是腸道組織，請一定注意清理干凈腸道內容物；部分特別容易降解的樣本，如胰腺，有條件可以使用“蛋白穩定保存液”“蛋白穩定保存液”具體使用方法和用量，建議參考對應廠(chǎng)家的試劑說(shuō)明書(shū)。

② 吸干水漬并切小塊，放入已標記的凍存管中，液氮速凍后，轉運至-80℃冰箱保存，運輸時(shí)請使用大體積干冰運輸。

干冰消耗量約為4-5kg/24h（根據溫度會(huì )有所變動(dòng)），請根據寄送時(shí)長(cháng)訂購足量干冰，用厚實(shí)的泡沫箱進(jìn)行運輸。

2、細胞樣本準備

① 細胞培養或處理結束后，去除培養液；

② 用滅菌后的PBS緩沖液快速沖洗細胞，而后加入少量滅菌后的PBS，細胞刮將細胞刮下，移于1.5ml離心管中；

③ 快速離心去除上清，收集細胞，液氮速凍后放入干冰或于-80℃冰箱中保存。

3、血液樣本采集

全血提取白細胞進(jìn)行檢測：

將新鮮全血收集于肝素鈉（綠頭）或EDTA（紫頭）抗凝管中，上下輕輕顛倒幾次使血液與抗凝劑充分混勻，置于4°C或冰盒中正立放置，在離體1h之內進(jìn)行白細胞提?。ò准毎杉唧w方法需參考各種分離液試劑說(shuō)明書(shū)）。

如果遠距離運輸不能保證時(shí)效性，請客戶(hù)自己提取好白細胞后，送白細胞沉淀送檢

4、菌類(lèi)

液體培養基：

挑取單菌落于50ml液體培養基中，適宜溫度培養過(guò)夜，并在對數生長(cháng)期進(jìn)行菌體采集。培養好的菌液適量轉入合適的離心管中，高速離心收集菌體，棄去上層培養基，用封口膜封口后液氮速凍，轉運至-80℃冰箱保存，大體積干冰運輸；

固體或半固體培養菌種收集：

涂布平板培養的微生物，在菌體生產(chǎn)最旺盛時(shí)期刮下，置于1.5或2.0ml的離心管中，迅速液氮速凍。-80℃冰箱保存，轉運至-80℃冰箱保存，大體積干冰運輸。

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樣本準備注意事項：

① 為保證實(shí)驗結果，需盡量準備新鮮或正確保存的樣品或蛋白提取液，陽(yáng)性對照樣品（細胞或組織）等。

② WB實(shí)驗樣品參考樣本含量：

（1）細胞不少于1×10^7個(gè)；

（2）組織樣品不少于50mg；

（3）總蛋白濃度（細胞不低于3μg/μl，組織不低于5μg/μl）；

③ 樣本標簽勿粘貼在EP管或錫箔紙上，低溫下標簽紙易脫落，建議使用記號筆標記；

④ 細胞樣本不建議采用粘稠保護劑保存，否則將無(wú)法離心收集存放在保護劑的細胞樣本。

如果組織是多平臺之間共用樣本，強烈建議客戶(hù)在送樣之前進(jìn)行分裝，分別送給對應平臺，避免影響時(shí)效性，規避樣本反復凍融的風(fēng)險